jueves, 29 de marzo de 2012



S.E.M.S                                               DGETI



CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO Industrial y de Servicios No. 199

PRACTICA No. 1






ALUMNO: VÍCTOR MANUEL MERA ÁLVAREZ



“PROCESAR CULTIVOS BACTEREOLOGICOS”



4º DM LAB CLÍNICO





DR. VICENTE MARTÍNEZ FRAGOSO
Objetivo:

Realizar  técnicas de preparación de frotis, de fijación y de coloración, obtenidos de medios sólidos y líquidos. Identificar las principales formas bacterianas y la importancia de tinciones simples en la caracterización morfológica de estos microrganismos.


Fundamento:

Se denomina frotis a la extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra o cultivo con objeto de separar lo más posible los microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida. Este frotis debe ser posteriormente fijado al vidrio del portaobjetos para poder aplicar los métodos habituales de tinción que permiten la observación al microscopio de las bacterias sin que la muestra sea arrastrada en los sucesivos lavados. La fijación de una extensión bacteriana hace que las bacterias queden inactivadas y adheridas al vidrio alterando lo menos posible la morfología y bacteriana y las posibles agrupaciones de células que pudiera haber.

Las bacterias se caracterizan por ser microorganismos unicelulares que carecen de membrana nuclear, en las cuales el material nuclear está organizado en una tira continua, a veces circular, contenido en el citoplasma, presentan un actividad metabólica y se dividen por fisión binaria, son organismos sofisticados y altamente adaptables a cambios del medio ambiente. Debido a su ubicuidad y su alta capacidad de adaptación su importancia en el campo medico como agentes causales de daño es altamente notable.

En tamaño y forma las bacterias de importancia médica son microorganismos muy pequeños que se presentan en tres formas generales: esféricos designados como cocos, organismos en forma de bastón designados como bacilos, y de formas espirilas, dentro de estas tres mencionadas anteriormente se encuentran otros microorganismos que adoptan variantes morfológicas designadas como formas pleomórficas.

Debido al pequeño tamaño de la mayoría de los microorganismos, se requiere de un microscopio óptico, ya sea de campo claro, en el que la observación de células vivas es limitada debido a que las células son incoloras y permiten el paso de una gran cantidad de luz. La observación de frotis teñidos es más recomendable. El frotis se prepara haciendo una extensión de los microorganismos sobre una superficie transparente, en la cual se fijan y se tiñen los microorganismos. Deacuerdo al número de soluciones colorantes y a los objetivos de estudio se pueden realizar diferentes tipos de tinciones como lo son: simple, diferencial, negativa y selectiva. Los colorantes más utilizados son sales formadas por iones coloridos cargados conocidos como cromóforos. Por ejemplo:

Cloruro de azul de metileno à azul de metileno + Cl (cromóforo)

Si el cromóforo es un ion positivo el colorante es de tipo básico, pero si la carga es negativa será de tipo ácido. La mayoría de las bacterias son teñidas por colorantes básicos, que permean la pared celular y se adhieren por enlaces iónicos débiles a moléculas con cargas negativas de la célula bacterianas.

Material:
ü  5 portaobjetos

ü  Piseta

ü  Cuba

ü  Microscopio

ü  Asa de platino


Reactivos:
ü  Azul de metileno
ü  Yodo lugol
ü  Fenol
ü  Aceite de inmersión
ü  Agua destilada


Cultivos solidos

ü  Exudado vaginal

ü  Uroanálisis

ü  Faríngeo

Muestras biológicas:

ü  Heces

ü  Orina

Preparación de frotis:

1.      Lavar perfectamente portaobjetos, secarlos con papel y rotularlos dependiendo de la muestra que se colocara.

2.      Centrifugar la orina y decantar para obtener sedimento.
d

3.      Esterilizar el asa al fuego del mechero.
.      Dejar enfriar el asa para evitar que al tomar la muestra las bacterias contenidas en esta sean destruidas.   Colocar el sedimento en un porta objetos con una gota de agua destilada y diluir lentamente, para después  colocarle un cubreobjetos.
      
      Para los cultivos sólidos,  colocar una gota de agua destilada en la que se mezcla una pequeña muestra del cultivo (colonia), extenderla suavemente y dejar secar al aire.
En el caso de las  heces, colocar una gota de agua destilada en el centro del portaobjetos y con ayuda del asa de platino colocar una pequeña muestra de heces por lo regular donde exista sangre o moco, esta diluirla y colocarle una gota de yodo lugol al final colocarle un cubreobjetos.







Fijación de frotis:

1.      Los cultivos de los medios sólidos completamente secos se fijaran con calor. Para esto se pasara el frotis rápidamente  de 2 a 3 veces en el interior de la parte amarilla de la flama del mechero.
2.      Palpar la parte inferior del portaobjetos con el dorso de la mano izquierda para enfriar y comprobar que no hubo sobrecalentamiento.
Tinción simple:

1.      Cubrir el frotis con 2 gotas de azul de metileno durante 30 segundos a 1 minuto.
.      Eliminar el exceso de colorante con lavado suave al agua corriente o con la ayuda de una piseta con agua.

3.      Dejar secar al aire.
Resultados:
Quiste de Entamoeba
40X


Cristales en orina.
100x



Cristales en forma más abundante.
40x
Conclusión:
Realizar un frotis, pudiera parecer muy sencillo, pero lo más importante radica en saber interpretar sus resultados, ya que de ellos dependen los diagnósticos médicos, y por tanto la salud del paciente, por ello es necesario practicar mas y mas, para dominar su preparación, su manejo y con todo ello esta práctica que es tan sencilla pueda dar buenos resultados en ámbitos laborales.
Además nos enseña a seguir manejando distintas muestras biológicas, es decir que va tomado de la mano con prácticas anteriores, conjuntando conocimientos que más tarde nos servirán de mucho, siendo así nuestra preparación un tanto más completa.



Fuentes de consulta:

DOCUMENTOS:
·            Preparación de un frotis bacteriano, CONSULTADO EN:www.joseacortes.com › prácticas de laboratorio


LABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS
Recuento de Leucocitos


Objetivo: Realizar y aplicar la metodología para determinar el número de leucocitos por mm3


Fundamento: Los leucocitos son células sanguíneas que en base a su morfología se clasifican en: Polimorfos nucleares o granulocitos y los mononucleares.

Se incluyen como polimorfonucleares a: Los Basófilos, Neutrófilos y Eosinófilos. En el gripo de los Mononucleares a: Los Linfocitos y Monocitos.

Los leucocitos dentro del organismo participan desarrollando diferentes funciones como son: La Fagocitosis, la defensa inmunológica específica o inespecífica.

 El recuento leucocitario representa el número de leucocitos en un litro de sangre completa. La fórmula leucocitaria tiene por objetivo determinar los porcentajes de las distintas clases de leucocitos normales y anormales en la sangre. A partir de los porcentajes puede incluso calcularse el número real de cada clase de leucocitos por mm3 de sangre (valor absoluto), conociéndose el total de leucocitos.

Principio: La cuantificación o recuento de leucocitos es importante para el diagnóstico de algunas enfermedades, como por ejemplo: Las leucemias.

El diluyente que más se utiliza en el laboratorio de hematología es el de Turk, el cual contiene ácido acético en una concentración hipertónica, lo cual provoca la lisis de los eritrocitos, pero, no de los leucocitos, el diluyente contiene además unas gotas de violeta de genciana o azul de metileno, el cual permite reconocer fácilmente a los leucocitos, ya que tiñen ligeramente su núcleo, permitiendo observarlos más fácilmente.

 La sangre anticoagulada se deposita en un líquido que permite evidenciar los leucocitos, manteniéndolos visibles, mientras que los eritrocitos son hemolizados. El recuento del número de leucocitos o glóbulos blancos se expresa por mm3 (milímetro cúbico).


Equipos

-Microscopio.

-Hemocitómetro (Cámara de Neubauer).


Consta de los siguientes elementos:

Una lámina portaobjeto gruesa, en el centro se hallan dos superficies cuadriculadas iguales separadas del resto de la lámina por surcos y dos barras transversales algo más elevadas.
Una laminilla cubreobjetos ópticamente plana, que, al colocarse sobre las barras elevadas de la lámina forma una cámara entre el cubreobjetos y la superficie cuadriculada. La altura entre el cubreobjetos y la lámina portaobjetos es de 0,1 mm.

Cada cuadrícula mide 3 mm de lado y se divide en 9 cuadrados grandes. Cada uno de los cuales mide 1 mm2 de superficie, que se subdivide a su vez en 16 cuadrados medianos. El cuadrado grande central se divide en  25 cuadrados pequeños y cada uno de ellos en 16 cuadraditos. Cada cuadrado pequeño mide 0,2 mm de lado (0,04 mm2 de superficie), y cada cuadradito mide 0,05 mm de lado (0,0025 mm2 de superficie). 



                        Cuadricula Cámara de Neubauer



Materiales y reactivos requeridos


Pipeta de glóbulos blancos (De Thoma) o pipeta automática (de 0 a 100 mL). Presenta cerca del extremo superior una marca de 11, inmediatamente continúa una dilatación (bulbo) que contiene una perla que funciona como mezcladora, luego sigue el extremo más largo de la pipeta (tallo) que está  dividida en 10 partes, con 2 marcas: 1 (parte final del bulbo) y 0,5 (a la mitad del tallo). Se le acopla a su extremo superior 1 tubo de goma y una bombilla para aspirar.



















1.     Diluyente de glóbulos blancos: Solución de Turk al 1%.
2.     Contador manual (Sólo si fuera necesario).
3.     Papel filtro.
4.     Alcohol al 70%.
5.     Algodón.
6.     Jeringa y agujas  (21 o 22) o base, aguja y tubo de vacutainer
Técnica.
1.-Una vez obtenida la sangre con anticoagulante o sangre capilar del dedo, se procede a aspirar la sangre con la pipeta de glóbulos blancos hasta la marca de 0,5 y  limpiar la punta con papel absorbente.


2.-Introducir la pipeta en el tubo que contenga solución de Turk y absorber hasta la marca de 11 (no debe haber burbujas).

3.-Tapar ambos extremos y proceder a mezclar manualmente o en un rotador automático por 2 ó 3 minutos.

 4.-Monte la laminilla de vidrio en la cámara para recuento que debe estar limpia y seca.

 5.-Agitar la pipeta y descartar las cuatro primeras gotas para luego colocar una gota pequeña de esta solución en la cámara.

 6.-Deje reposar por espacio de 3 minutos para que las células se sedimenten.


 7.-Enfocar con objetivo de 10x y contar en 4 cuadrados grandes angulares. Cuando se usa la pipeta automática, se toma 20 mL (0,02 mL) de sangre total con anticoagulante o sangre capilar con anticoagulante y se diluye en un tubo que contenga 380 mL de solución de Turk (aquí tenemos una dilución 1:20).


Lectura 

La lectura se realiza en los campos 1, 3, 7 y 9 como está indicado en la figura. Además de los leucocitos contados dentro de cada uno de los cuadrantes, se deben contar todos los leucocitos que se encuentren adheridos en la línea horizontal superior y vertical exterior, o de lo contrario, todos los leucocitos, adheridos a la línea horizontal inferior y vertical interior.



Resultados

Leucocitos contados en 4 campos

Nº de leucocitos x mm³ = altura x dilución x área

Leucocitos contados en 4 campos Reemplazando = 1/10 x 1/20 x 4

Leucocitos contados en 4 campos = 4/200 = 1/50

Nº de leucocitos x mm³ = Nº leucocitos contados x 50
4/200
Resultados:

Conclusión:
Las células o glóbulos blancos de la sangre son de dos tipos principales: los granulosos, con núcleo multilobulado, y los no granulosos, que tienen un núcleo redondeado. Los leucocitos granulosos o granulocitos incluyen los neutrófilos, que fagocitan y destruyen bacterias; los eosinófilos, que aumentan su número y se activan en presencia de ciertas infecciones y alergias, y los basófilos, que segregan sustancias como la heparina, de propiedades anticoagulantes, y la histamina que estimula el proceso de la inflamación. Los leucocitos no granulosos están formados por linfocitos y un número más reducido de monocitos, asociados con el sistema inmunológico. Los linfocitos desempeñan un papel importante en la producción de anticuerpos y en la inmunidad celular. Los monocitos digieren sustancias extrañas no bacterianas, por lo general durante el transcurso de infecciones crónicas. Para poder realizar la práctica se hace el procedimiento de cuenta directo pero se darán algunos aparte:
Para una cuenta directa total o conteo en cámara de newbauer                                                     La cuenta total de los leucocitos generalmente se mide en el hemocitometro después de diluir  la sangre total 1 a 20 con un liquido especial, el cual separa los eritrocitos. Pueden emplearse contadores electrónicos. El rango normal en adultos es de 4-10x10^9/lt. En los niños la cuenta es mayor: de 10-25x10^9/lt.., al nacer; desciende a 5-12.5x10^9/lt, a la edad de 10 años y sigue el decenso anterior al nivel del adulto alrededor de los 20 años de edad. Las cuantas visuales son relativamente inexactas, hasta con 20% de error, pero los contadores electrónicos por lo general son mas precisos dentro de 1 a 2%.
Cuenta diferencial
Se lleva acabo clasificando cuando menos 100 leucocitos sobre los frotis de sangre. Luego se multiplica la cuenta total por la proporción presente para dar el método absoluto. El rango numérico normal para los diferentes tipos de leucocitos en el adulto es; neutrofilos, 2.5-7.5x10^9/lt; linfocitos, 1.5-3.5x10^9/lt.: monocitos, 0.2-0.8x10^9/lt.: eosinofilos, 0.04-0.4x10^9/lt.; basófilos, 0.015-0.1x10^9/lt. En los niños hay relativamente más linfocitos, los cuales a menudo sobrepasan a los neutrofilos. En los africanos, los neutrofilos a menudo se encuentran en menor número que en cualquier europeo.

Cuanta directa de eosinófilos
En ocaciones tal procedimiento se lleva a cabo contando células en un hemocitómetro después de dilución de la sangre con un líquido diluyente especial.

Bibliografía:

·         "Sangre." Microsoft® Encarta® 2007 [DVD]. Microsoft Corporation, 2006 eldia17 de marzo de 2012
·         Hematología clínica H.J. Woodliff/R.P. Hermann de la biblioteca del cbtis199 el 18
de marzo de 2012.
·         Ciencias de la salud Sexta edición Bertha Higashida Hirose




LABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS
Cuenta de Plaquetas en Cámara de Neubauer
Propósito:
 Que el alumno realice e interprete la técnica directa para la cuenta de trombocitos o plaquetas en la Cámara de Neubauer.

Fundamento:
Una de las funciones der las plaquetas es participar en el mecanismos de la hemostasia   (Hemos= sangre, stasis= Detención), adhiriéndose entre ellas y las paredes de los vasos lesionados, para formar así, el trombo plaquetario o tapón hemostático.

El paciente con un trastorno hemorrágico, clínicamente significativo, acude al médico con algunos tipos de síntomas hemorrágicos, el tipo de hemorragia puede indicar la parte defectuosa del mecanismo de coagulación, dentro de éstas causas puede ser la falta en la cantidad adecuada de plaquetas (trombocitopenia).

La hemorragia de vasos sanguíneos subcutáneos en piel intacta se pueden ver como petequias o equimosis, las petequias son manchas de color rojo a morado menores de 3 mm de diámetro. Resultan de la salida de sangre de vasos de tipo capilar.

Las  equimosis son los “moretones” (NO CONFUNDIR CON HEMATOMAS POR FAVOR), de mayor tamaño de diámetro y también tienen como causa la salida de sangre de un vaso sanguíneo de mayor tamaño que un capilar, son de color rojo a morado después se vuelven amarillentos, tardan en sanar de 2 a 4 semanas.

La  equimosis puede presentarse espontáneamente o debido a un traumatismo y puede ser dolorosa. Cuando se encuentran equimosis en gran cantidad y sin traumatismo aparente, el trastorno se conoce como Diátesis hemorrágica y puede ser producida por anormalidades en los vasos sanguíneos, por la disminución en el número de plaquetas o bien por el mal funcionamiento de las mismas.

Se encuentra cifras de plaquetas por debajo de lo normal en padecimientos como:

Púrpuras trombocitopénicas, en enfermedades como las leucemias que se asocian a disminución en la producción de plaquetas, Síndrome de Wiscott-Aldrich, enfermedad de Bernar-Soulier y en la anomalía de May-Hegglin.

También pueden encontrarse cifras por debajo de lo normal en: El Alcoholismo, la Esplenomegalia, etc.

Se pueden encontrar cifras por arriba de lo normal (trombocitosis) en: La Leucemia granulocítica crónica, Policitemia vera, Mielofibrosis, Hemorragia aguda, Anemia por deficiencia de hierro, Anemia Hemolítica, etc.


Reactivos y Material:

Pipeta de Thoma para glóbulos rojos.

Cámara de Neubauer con cubrehematímetro (Hemocitómetro).

Agitador para Pipeta de Thoma.

Cajas de Petri.

Microscopio.

Papel filtro

Muestra biológica: Sangre venosa con EDTA.

Técnica:

1.- Obtener 10 ml de sangre venosa, extraída por el procedimiento habitual, utilizando como anticoagulante EDTA.















2.- Se agita la sangre colocada en un tubo de ensaye y se procede a la cuenta de plaquetas de la siguiente manera:

3.- Llevar la sangre hasta la marca 1.0 de una pipeta de Thoma para glóbulos rojos, aforando con la solución diluyente de plaquetas hasta la marca de 101 (Dilución 1: 100).













4.-  Colocar la pipeta en el agitador y mezclar durante 1 minuto.

5.- Colocar la Cámara de Neubauer sobre una superficie horizontal y poner el cubrehematímetro sobre las mesetas.

6.- Descartar las primeras  4 gotas de la ´pipeta de Thoma. Con la quinta gota cargar la Cámara, depositándola entre la meseta y el cubrehematímetro y dejarla difundir por capilaridad, teniendo cuidado de que no se formen burbujas o se derrame el líquido hacia los surcos.

7.-  Colocar la Cámara ya montada en el interior de una caja de Petri, con papel filtro y absorbente humedecido en agua para evitar la evaporación, dejar en reposo de 10 a 15 minutos.

8.- Observar al microscopio contando en la cuadrícula central (para glóbulos rojos) las plaquetas que aparecen mucho más pequeñas que los hematíes, redondas, alargadas u ovales, altamente refringentes.

9.- Realiza los cálculos siguientes para obtener la cantidad de plaquetas por mm3.

10.- El cuadro central de la cuadricula mide 1.0 mm por lado y está dividido en 16 cuadritos más pequeños, de tal manera que el número total de éstos últimos es de 400, mismos en los que se lleva a cabo el recuento de plaquetas.

Cálculos:


No.de plaquetas / mm3  =  No. de Plaquetas contadas  X  Dilución  X  10

Dilución: 1:100  =  100

Este factor corresponde, para obtener los resultados por mm3 ya que el volumen de la Cámara es de 0.1 mm3.

Ejemplo:

No. de plaquetas  =  375 X 100 X 10  =  375 000 plaquetas / mm3.



Informe:

1.- Dibuja las plaquetas tal y como las observaste en la Cámara de Neubauer.

2.- Esquematiza el proceso de la técnica que se siguió para la determinación cuantitativa de las plaquetas.

3.- Anota los cálculos necesarios que se realizaron para obtener el número de plaquetas por mm3.

4.- Investiga la composición del diluyente que se emplea para la cuenta de plaquetas.


Conclusiones:
Las plaquetas de la sangre son cuerpos pequeños, ovoideos, sin núcleo, con un diámetro mucho menor que el de los eritrocitos. Los trombocitos o plaquetas se adhieren a la superficie interna de la pared de los vasos sanguíneos en el lugar de la lesión y ocluyen el defecto de la pared vascular. Conforme se destruyen, liberan agentes coagulantes que conducen a la formación local de trombina que ayuda a formar un coágulo, el primer paso en la cicatrización de una herida. Plaqueta, también denominada trombocito, fragmento citoplasmático de un megacariocito (la célula de mayor tamaño presente en la médula ósea), que se encuentra en la sangre periférica, donde interviene en el proceso de coagulación de la sangre. Son extruidas por la medula ósea o por el bazo. Normalmente hay de 150 000 a 450 000/pl de sangre.
Por lo general se cuentan directamente en un hemocitómetro después de diluir la sangre 1 a 100.           Se utiliza una gama de líquidos especiales, algunos de los cuales separan los eritrocitos. Se requiere experiencia para obtener resultados confiables; los valores varían algo según el método, pero puede aceptarse como normal la cifra 150-400x 10^9/lt. Se puede hacer cuentas indirectas contando el numerado de plaquetas en cada uno de los diez campos microscópicos, conteniendo cada uno alrededor de 100 eritrocitos. Esto proporciona el número de plaquetas             X10^9. Este método es relativamente poco preciso, pero de cierto valor en la práctica.
Bibliografía
·         Hematología Clínica de H.J. Woodliff y R.P. Herrmann EL DIA DE CONSULTA FUE EL 24 DE MARZO D 2012
·         Sangre." Microsoft® Encarta® 2007 [DVD]. Microsoft Corporation, 2006.Consulte esta fuente el día 16 de marzo de 2012.
·         Ciencias de la salud Sexta edición Bertha Higashida hirose el dia 16 de marzo de 2012.